将发酵管洗净，进行消毒处理，再用无菌水洗涤2 一3 次，从悬浮在20oml 无菌水中取出20ml ，加入质量分数2 一10 %葡萄糖，溶解后注入发酵管内，注入的容量为弯管处的1 / 2 ，使直管内没有气泡，管口用棉花塞好，移入30 ℃ 恒温箱内培养。酵母在培养生长的呼吸时消耗氧而生成二氧化碳气体，被汇集在管的顶部，根据生成二氧化碳气体的多少，表示发酵能力的大小。气体体积从刻度管的液面读出。

它是一只具有高脚底座的长颈弯管，刻度具玻璃底座。管的下端制成弯颈和一只球状口，管壁上刻有容量标线，它是存放待测发酵液，收集发酵液中产生二氧化碳气体计量用。底部具有宽大的底座便于放置平稳。发酵管与底之间为一玻璃棒连接，作固定发酵管用。

此器具被广泛用于测定产气量。这种方法简单，不适用于精确测定发酵强度。其优点是可以收集所产生的气体，取得分析样品。

适用于食品工业、酵母厂、酿造厂等单位，作酵母发酵效率的测定，以及在医药上作细菌卫生试验，对水、牛乳、沟渠污物的发酵试验。如在细菌学上作糖元在组织内进行无氧分解而生成乳酸的变化等。因使用面狭窄，销路极微。

栽培季节及菌种的选择→配料→拌料→装袋→灭菌→接种→发酵管理→变温催芽→出菇(或它他食用菌)管理→采收→采后管理。

1、菌种的选择:选择的菌种应是生长状态良好且无杂菌污染的菌种。

2、灭菌:0.05mp下排两次冷空气;0.11mp下灭菌2h，冷却后出锅。

3、发酵管理:温度25℃，湿度为70%，黑暗下通风换气(刺孔通气)，翻堆除杂，时间为50-60天。

4、补充水分:前期菌砖含水量保持60%左右，能满足开头几批出菇对水分的要求，故不用直接喷水。只提高菇房的空气相对湿度。而中期菌砖逐渐干燥，可视天气而定，于菌砖上喷些雾化水，以提高湿度。一般出菇后空气相对湿度应保 持85%~95%之间。后期菌砖更为干燥，而表面菌膜又厚又硬，喷水难以吸入，应改用浸水的办法使其充分吸水。一般在20℃时浸水8~12小时，使含水量达50%~55%，然后置于架上继续出菇。采收一批后再同样进行浸水处理，直到出菇结束。

5、通风降温:出菇期中，室内要保持空气新鲜，特别早期和末期，气温较高，不适合出菇要求，而且容易引起杂菌为害，所以晚上要开窗通风降温。

6、防除杂菌:栽培过程菌砖常被绿霉污染为害，主要来自菌种、菇房和用具消毒不彻底，以及室内高温闷热造成，除严格做好栽培管理过程中的消毒工作外，当出现绿霉污染时应采取措施加以防治。如刚压菌砖菌丝尚未愈合时，出现绿霉，应先加强通气降温，待愈合后再用石灰水清液擦洗，以改变酸碱度，控制其生长蔓延。如果已深入菌砖内，可挖除感染部位，再行补种。个别污染严重的菌砖可移到室外，用清水冲洗，晾干2~3天，把感染部位挖去补种或切除，方可搬回栽培室培养出菇。

7、出菇管理:温度10-15℃，湿度90%，散射光，注意通风换气。

1﹑使用仪器和试剂:发酵管、吸管﹑发酵剂、烧杯﹑0.1mol/LNaOH酚酞(PP)、溴酚蓝(BP B)。

2﹑测量方法:

①、全酸度(TA):取槽处理液10mL加酚酞(PP)指示剂3-5滴，再用0.1mol/L NaOH滴定，颜色由无色变至粉红色，5-10秒不褪色，即为其终点，此时所消耗0.1mol/L

NaOH之毫升数，即为其全酸度之度数。

②、游离酸(FA):取槽处理液10mL加溴酚蓝(BPB)指示剂3-5滴，再用0.1mol/L

NaOH滴定，颜色由浅黄色变至浅蓝色，5-10秒不褪色，即为其终点，此时所消耗0.1mol/L

NaOH之毫升数，即为游离酸之度数。

③、促进剂(AC):用发酵管取处理液至8分满，再加发酵剂约1-2克，使药粉落至发酵管底后，立即使其恢复立姿，然后观察管中所产也生气体的毫升数，即为促进剂的浓度。